PEMERIKSAAN PARASITOLOGI – FESES

Pemeriksaan tinja untuk parasit bertujuan mendeteksi adanya telur, kista, trofozoit, larva, atau cacing dewasa penyebab penyakit parasit pada manusia.

 

1. JENIS SPESIMEN

1. Tinja segar (ideal <1 jam, terutama untuk trofozoit).
2. Tinja diawetkan (SAF, PVA, formalin 10%).
3. Volume 3–5 gram.

2. PERSIAPAN PASIEN

1. Hindari obat antiparasit 1 minggu sebelum pemeriksaan.
2. Hindari konsumsi bismuth, minyak mineral, antibiotik tertentu.
3. Gunakan wadah bersih, kering, bertutup.
4. Tidak terkontaminasi urin.

3. METODE PEMERIKSAAN

A. Pemeriksaan Makroskopis

1. Warna & Konsistensi, Cair → curiga infeksi protozoa. Berdarah → amoeba patogen
2. Mukus. Mukus + darah → colitis amoeba.
3. Cacing dewasa
4. Benda asing. Sisa makanan, serabut otot, lemak.

B. Pemeriksaan Mikroskopis

1) Metode Langsung

Tujuan: Mendeteksi trofozoit hidup, kista, telur.
Larutan: NaCl fisiologis 0,85% dan eosin 1–2% / lugol.
Cara kerja:

1. Ambil 1–2 mg tinja.
2. Tambahkan 1 tetes NaCl → homogenkan.
3. Tutup dengan cover glass.
4. Amati di mikroskop dengan lensa objektif 10× dan 40×.

Buat preparat lugol untuk pewarnaan inti kista.
Keunggulan: cepat, mendeteksi parasit hidup.
Kelemahan: sensitivitas rendah bila infeksi ringan.

2) Metode Konsentrasi

 a. Konsentrasi Sedimentasi (Formalin-Etil Asetat)

• Sensitivitas tinggi untuk telur dan kista.
• Formalin mematikan parasit dan mempertahankan bentuk morfologi.

Langkah:

1. Emulsikan tinja dalam formalin 10%.
2. Saring ke tabung konikal.
3. Tambah etil asetat → kocok → centrifuge 1500 rpm 2–3 menit.
4. Ambil endapan → buat preparat.

 

b. Konsentrasi Flotasi

• Menggunakan larutan NaCl jenuh / ZnSO₄ jenuh.
• Cocok untuk telur ringan (Ascaris fertil, hookworm).

 3) Pewarnaan Permanen Trichrome 

Digunakan untuk protozoa usus.
Langkah umum:

• Fiksasi tinja dalam PVA.
• Sediaan difiksasi panas/alkohol.
• Pewarnaan trichrome.
• Amati dengan perbesaran 100× oil immersion.

 
4) Uji Khusus

• Selotip anal Graham → Enterobius vermicularis.
• Larva Harada–Mori → Hookworm & Strongyloides.
• Kultur tinja (agar plate) → Strongyloides stercoralis.
• Kalkulasi intensitas infeksi (EPG metode Kato-Katz):

5) Metode Modern (Opsional jika tersedia)

• Pemeriksaan antigen ELISA (E. histolytica, Giardia).
• PCR panel gastrointestinal untuk deteksi DNA parasit.

 
4. INTERPRETASI HASIL

Telur Nematoda

• Ascaris lumbricoides: oval, dinding tebal, albuminoid.

Telur Ascaris lumbricoides fertil corticated

• Trichuris trichiura: bipolar plug.

Telur Trichuris trichiura

• Hookworm: oval, dinding tipis, blastomer 4–8.

Telur cacing tambang

• Enterobius vermicularis: telur asimetris, sisi datar.

Telur Enterobius vermicularis

Kista Protozoa

• Giardia lamblia: piriform, 2–4 inti.

Kista Giardia lamblia

• Entamoeba histolytica: 1–4 inti, karyosom sentral.

Trofozoit Entamoeba histolytica

Kista Entamoeba histolytica

5. PELAPORAN

Format pelaporan:

1. Identitas pasien.
2. Makroskopis: warna, konsistensi, lendir, darah.
3. Mikroskopis:

• Telur/cacing/kista/trofozoit — jenis & stadium
• Intensitas (bila pakai Kato-Katz).

Kesimpulan.
Contoh hasil:
Ditemukan telur Trichuris trichiura (+) jumlah sedang.
Atau:
Tidak ditemukan parasit usus.

 

6. KENDALI MUTU

• Gunakan kontrol positif (preparat referensi).
• Kalibrasi mikroskop berkala.
• Catatan log pemeriksaan harian.
• Duplo pemeriksaan untuk hasil meragukan.